美國藥典USP40〈1223〉對NAT法支原體檢測產(chǎn)品有關(guān)性能驗證的要求，包括專屬性、檢測限（LOD）、耐用性、重現(xiàn)性。其中對于專屬性的定義及驗證方法如下：定義：替代性定性微生物方法的特異性定義為其檢測特定于該技術(shù)的一系列挑戰(zhàn)微生物的能力?！拔?span style="color:#f5c81c;">生物范圍”可以定義為代    表對患者或產(chǎn)品風險的有限數(shù)量的微生物，在生產(chǎn)環(huán)境和產(chǎn)品故障中發(fā)現(xiàn)的微生物，適合于測量替代方法的有效性的微生物，以及在適合于方法和產(chǎn)品的形態(tài)學(xué)和生理屬性方面具有 代    表性的微生物。證明：特異性是通過藥典和替代方法中微生物的挑戰(zhàn)面板的可比回收率來證明的。微生物挑戰(zhàn)超出了檢測或定量的限度，但達到了可以衡量方法有效性的水平。南京正揚的支原體檢測試劑盒的價格。合肥支原體檢測方法學(xué)

日本藥典JPXVⅢ〈G3-14-170〉對NAT法支原體檢測產(chǎn)品有關(guān)性能驗證的要求，包括檢測限（LOD）、專屬性、耐用性、可比性。其中對于專屬性的描述及要求如下：專屬性是指在樣本中能夠明確檢測到目標核酸存在的能力。核酸擴增法的專屬性依賴于引物/探針的選擇和測試條件的嚴謹性(包括擴增和檢測步驟)。選擇特異的及對絕大多數(shù)支原體(柔膜體綱，如支原體屬和相關(guān)種屬如解脲支原體，螺原體，無膽甾原體等)保守的序列來設(shè)計引物/探針是相當重要的。核酸擴增法檢測支原體種屬的能力應(yīng)該由章節(jié)中所列的參考支原體的實驗結(jié)果來確認，而不推薦采用引物/探針與數(shù)據(jù)庫比對的方法，(JPXVⅢ提供了用作檢測的建議支原體種類)專屬性。合肥雞毒支原體檢測公司生物制品放行時支原體檢測的金標準。

我國藥典規(guī)定的支原體檢測方法為培養(yǎng)法和指示細胞染色法。但這些方法也存在一些不盡人意之處，如所需時間較長，有的操作復(fù)雜等?！吨袊幍?020年版3301支原體檢測法》中指出：除培養(yǎng)法和DNA染色法外，也可采用經(jīng)國家藥品檢定機構(gòu)認可的其他方法，對支原體進行檢測。由于支原體檢測存在必要性，如何盡可能提高檢測的準確率以及效率尤為關(guān)鍵。不少業(yè)內(nèi)指導(dǎo)原則指出，支原體的核酸法檢測，通過嚴格且充分的方法學(xué)驗證，可以替代藥典中對的培養(yǎng)法與DNA染色法。

常用的支原體檢測方法有傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)法、指示細胞培養(yǎng)法（DNA染色法）、ELISA法、PCR法等。指示細胞培養(yǎng)法（DNA染色法）則靈敏度比較低，因背景熒光的存在，細胞輕度支原體污染不易檢出；細胞裂解死亡產(chǎn)生碎片也會被熒光染料染色被誤認為是支原體染色所致造成假陽性；另外，熒光染色法一般要求培養(yǎng)無污染的指示細胞作為對照，增加了檢測的工作量。目前，PCR法為主流的支原體檢測手段，PCR法比傳統(tǒng)分離培養(yǎng)法檢測時間大縮短，且靈敏度高。歐洲藥典對支原體檢測的要求有哪些？

qPCR法支原體檢測的原理：PCR反應(yīng)過程中可通過加入熒光標記的特異性探針檢測PCR產(chǎn)物生成的量。帶有一對熒光分子的探針與樣品中DNA通過堿基互補配對的原則進行結(jié)合，隨著PCR反應(yīng)的進行，Taq聚合酶合成DNA，同時沿5’-3’方向水解DNA探針，一對熒光分子隨著探針的水解而分開，發(fā)出熒光信號。通過連續(xù)監(jiān)測反應(yīng)體系中熒光讀數(shù)的變化，可即時反映特異性擴增產(chǎn)物量的變化。具備靈敏度高、特異性好、操作簡單、用時較短等優(yōu)點。日本藥典JPXVⅢ〈G3-14-170〉對NAT法支原體檢測產(chǎn)品有關(guān)性能驗證的要求，包括檢測限（LOD）、專屬性、耐用性、可比性。其中對于檢測限的描述及要求如下：檢測限是一個分析方法對樣本中目標核酸能檢測出的蕞低量，但無需準確定量。在建立分析方法的檢測限時，需要確定核酸擴增分析的陽性臨界值。陽性臨界值是95%的測試中能被檢測到的每體積樣本中的目標序列拷貝數(shù)。確定陽性臨界值需對表征過的且已校準(CFU或核酸拷貝數(shù))的支原體參考株或國際標準株做一系列的梯度稀釋，并于不同時間(日間)進行檢測以檢查測試間的差異。qPCR法支原體檢測方法有哪些。鄭州PCR法支原體檢測公司

日本藥典對支原體檢測的要求。合肥支原體檢測方法學(xué)

qPCR法支原體檢測試劑盒的操作流程包括支原體DNA提取、qPCR試劑配制、qPCR加樣及上機檢測、結(jié)果分析四個環(huán)節(jié)。支原體DNA提取包含樣品前處理（離心分離上清等）、樣品裂解液消化、支原體DNA與磁珠結(jié)合、一次洗滌、二次洗滌、洗脫；qPCR試劑在配制時需先將試劑放置于室溫，避光放置30min，直至試劑融化，各個試劑組分混勻后按照說明書進行配制并分裝。在實驗室，注意分區(qū)操作，降低實驗發(fā)生污染的風險。用qPCR法進行支原體檢測時，出現(xiàn)擴增曲線異常的可能原因是什么？①如出現(xiàn)非特異性擴增現(xiàn)象，該問題是由反應(yīng)管未蓋緊或密閉性差引起溶液蒸發(fā)而造成。上機前確保管蓋密閉，反應(yīng)結(jié)束后查看八聯(lián)管或96孔板各管液面是否一致。與設(shè)備硬件相關(guān)，需咨詢硬件供應(yīng)商解決。②如出現(xiàn)擴增曲線不平滑現(xiàn)象：可能與ROX加入量不足相關(guān)，個別設(shè)備有ROX校正功能，不同型號設(shè)備對ROX的需求量會有差異，需設(shè)置實驗摸索合適的ROX加入量。合肥支原體檢測方法學(xué)