評估轉染效率至關重要，特別是在需要高轉染效率以保證特定下游靶標轉錄后調控的功能研究中?？梢赃x擇多種策略來評估轉染效率。實時聚合酶鏈反應(qPCR)是一種通過直接測量特定外源蛋白表達水平來評估轉染效率的定量方法。細胞內核酸或其他可能受到外源核酸(如miRNAs)影響的細胞內核酸。在瞬時轉染的情況下，每次轉染后都應進行qPCR，以確保良好的轉染效率，然后再進行下游實驗。與質粒報告系統(tǒng)共轉染是另一種策略，可以通過表達特定的報告蛋白(如熒光素酶或β-半乳糖苷酶)來評估轉染效率。采用小RNA熒光素酶報告系統(tǒng)以干擾(RNAi)研究為例，miRNA轉染成功的標志是熒光素酶活性下調，這是由于miRNA與轉錄的熒光素酶mRNA 3'端結合導致mRNA降解。熒光顯微鏡是評估轉染效率的另一種常見、簡便、快速的方法。它通常涉及使用攜帶熒光報告基因或標記有熒光團的寡核苷酸的載體來進行熒光檢測。然而，熒光顯微鏡只能提供對轉染效率的定性或半定量測量，這可以使用ImageJ等專門軟件來確定。PHP是由天然來源的羥基脯氨酸(如膠原蛋白、明膠和其他蛋白質)制成的，是一個用作基因載體的聚酯。浙江懸浮細胞轉染試劑

不同種類的納米顆粒轉染細胞系后，產生不同的效率、毒性和組織特異性。這些大量的測試表明，納米顆粒作為載體的效率與普通的非病毒轉染方法相當。Tabatt等人所做的研究比較了使用脂質體、陽離子固體li-pid納米顆粒和兩種商用轉染劑對COS-1細胞系(非洲綠猴腎成纖維細胞樣細胞)使用四種不同的轉染介質所取得的轉染效果。固體脂質na-noparticles轉染組和溶酶體(均由DOTAP -N -(1-(2,3-二聚乙氧基)丙基)-N,N,N-三甲基硫酸銨)轉染組的熒光素酶基因表達效率沒有統(tǒng)計學上的***差異，在每種轉染介質中保持相同水平。然而，獲得的轉染效率低于使用商業(yè)轉染劑EscortTM 的效率，該轉染劑由DOPE(1,2-二-(順式-9-十八烷基)- n-甘油-3-磷酸乙醇胺)組成。研究人員通過在HepG2細胞(人肝細胞肝*細胞系)上使用固體脂質納米顆粒，實現了與市買的lipo-fectamine相同的綠色熒光蛋白和熒光素酶蛋白表達水平。海南青島轉染試劑流式細胞術可以更精確地定量表達特定熒光基因的細胞，以評估轉染效率。

為了在體外和體內可重復地傳遞基因和siRNA，含有核酸的脂質體、脂叢和多叢的配方需要精確組成轉染試劑。雖然有幾項研究已經調查了血液成分如何使脂質和聚合物納米顆粒不穩(wěn)定，對于介導細胞中基因傳遞或沉默的傳遞系統(tǒng)的**終組成知之甚少。多叢和脂叢的組成在系統(tǒng)給藥進入血液后會發(fā)生不斷的變化。過多的聚合物鏈或脂質體成分不強烈附著于復合物將從顆粒中脫落，而新的成分，如脂蛋白，可以粘附在復合物的表面。這不僅會導致顆粒的不穩(wěn)定，還會改變生物分布或促進體內***。了解在體內遞送的每個階段(在給藥部位，在血液循環(huán)過程中，在***和組織的細胞外基質中，以及**終進入靶細胞時)，多聚物和脂聚物的組成如何變化，可能有助于設計具有更高穩(wěn)定性的合成載體系統(tǒng)。

基于病毒的轉染，或者更具體地稱為轉導，涉及使用病毒載體將特定的核酸序列帶入宿主細胞。逆轉錄病毒，如慢病毒，通常用于穩(wěn)定轉染。相比之下，腺病毒、腺相關病毒(AAV)和皰疹病毒是不能保證穩(wěn)定轉染的病毒載體。與非病毒轉染相比，病毒轉導被***認為是一種轉染難以轉染的細胞(如原代細胞)的高效方法。一般來說，逆轉錄病毒只能用于轉染分裂細胞，而腺病毒、AAV和皰疹病毒可用于轉染分裂細胞和非分裂細胞。然而，病毒轉導與較高的細胞毒性相關，并可能造成病毒***的風險。病毒載體通常包含一個病毒包膜，它包圍并保護病毒。表面蛋白可能存在于某些類型的病毒(如腺病毒)的表面，以促進與宿主細胞的接觸和通信。病毒遺傳物質被包裹在衣殼中，進入宿主細胞后，衣殼將被打開。與腺病毒、aav和皰疹病毒的基因組不同，這些病毒的基因組是單獨維持的，逆轉錄病毒基因組被整合到宿主基因組中。通常，腺病毒和皰疹病毒攜帶雙鏈DNA, AAV攜帶單鏈DNA，而逆轉錄病毒攜帶RNA。Severino et al.進行的研究也指出了陽離子脂質作為基因遞送納米載體的潛在毒性。

脂質顆粒的加入導致內體DNA釋放增加。Delgado等人通過在腎細胞中添加魚精蛋白，設法提高了固體脂質納米顆粒的轉染效率，但與不添加魚精蛋白的對照組相比，相同的多功能單元，DNA/魚精蛋白/SLN(固體脂質納米顆粒)，降低了HEK 293細胞系(人胚胎腎細胞)的轉染效率。這給了我們希望，通過加入必要的配體的可能性，使用納米顆粒的轉染可能會調整到給定的細胞類型。Bahrami et al.經表明，不同種類的納米顆粒以不同的方式與細胞膜結合。形成這些鍵的差異取決于它們的球形或非球形形狀，也取決于不同納米顆粒所表現出的各種粘附電位以及它們進入后引起的膜形狀變化。Prabha等人的實驗表明，納米顆粒的大小對COS-1(非洲綠猴腎細胞)和HEK 293細胞系的轉染效率有***影響:使用較小的納米顆粒時，轉染效率分別是使用較大納米顆粒的27倍和4倍。在兩種分散體中，小顆粒和大顆粒的細胞攝取、表面電荷和DNA釋放是相同的，這表明使用納米顆粒進行基因傳遞的效率受到許多因素的影響，它們的使用應該根據細胞類型和應用條件進行具體調整。此外，用作納米顆粒分散劑的不同物質，如十六種不同類型納米顆粒的豬肺表面活性劑和牛血清白蛋白，對其在溶液中的團聚有***影響。小RNA和質粒DNA的共轉染可用于評估轉染效率。浙江shRNA轉染試劑

一項與抗血管生成基因傳遞高度相關的發(fā)現是，陽離子脂質體（CLs）選擇性地靶向的血管系統(tǒng)。浙江懸浮細胞轉染試劑

RNA和信使RNA與DNA轉染類似，RNA可以通過基于RNA的病毒或非病毒載體導入真核細胞。與涉及DNA的轉染相比，RNA轉染可能產生更高的轉染效率，因為后者不需要穿越核膜。在不需要基因組整合、轉錄和轉錄后處理的情況下，RNA轉染也可能加速所需蛋白質的產生。使用基于信使RNA(mRNA)的載體也可以防止因整合到宿主基因組而引起的并發(fā)癥，從而允許表達特定的，所需的蛋白質。然而，RNA轉染后，蛋白質表達是短暫的，與DNA相比，RNA的穩(wěn)定性相對較差，因此在細胞內運輸時更容易降解。小RNA是長度為18-200個堿基對(bp)的RNA分子，具有調控轉錄后基因調控和RNA修飾的能力。小RNA包括microRNAs(miRNAs)、小干擾RNA(siRNA)、短發(fā)夾RNA（shRNA）等。microRNAs和piRNAs都是內源性單鏈小RNA。miRNAs(18-25bp)通過抑制目標mRNA或干擾其翻譯起始，參與下游mRNA的轉錄后調控。與miRNAs和piRNAs類似，siRNA也在調控轉錄后基因表達中發(fā)揮作用。siRNA的長度通常為20-24bp，可表達為內源性或外源性雙鏈小RNA。shRNA是一種具有發(fā)夾環(huán)的內源性雙鏈小RNA。shRNA可以結合mRNA上的互補序列來降解它。浙江懸浮細胞轉染試劑